Витаминов в точно установленных дозировках. В качестве источников азота в них используются аминокислоты. Достоинство этих сред в том, что они имеют постоянный состав, по ним можно определить потребности микробов в тех или иных питательных веществах.
Плотные питательные среды готовят из жидких с добавлением уплотнителя. В качестве уплотнителя обычно применяют агар-агар. Агар-агар - продукт, получаемый из морских водорослей, представляет собой желтоватый порошок или пластинки, содержит высокомолекулярные полисахариды , не расщепляется большинством микроорганизмов, не разрушается при автоклавировании, питательную ценность сред не изменяет, не подавляет рост микробов. Для иммунологических и бактериологических полей используется вымороженный, осветленный агар, который при кипячении или автоклавировании смеси порошка с водой расплавляется при температуре 85-100°С, а при охлаждении до 45-48°С образует гель.
Для приготовления, плотных питательных сред агар-агар добавляют в концентрации от 1,5 до 3%.
Простые среды.
Мясо-пептонный бульон (МПБ) является белковой основой всех сред.
Существует несколько способов приготовления МПБ:
а) на мясной воде с добавлением готового пептона - это так называемый мясо-пептонный бульон;
б) на переварах продуктов гидролиза исходного сырья при помощи ферментов (трипсина - бульон Хоттингера, пепсина - бульон Мартена).
Они удобны при транспортировке, могут длительно храниться, избавляют лаборатории от громадного процесса приготовления сред, приближают к разрешению вопроса о стандартизации сред. Медицинская промышлен-ность производит сухие среды Эндо, Левина, Плоскирева, висмутсульфит агар, питательный агар, углеводы с индикатором ВР и другие.
Термостаты
Для культивирования микроорганизмов используют термостаты.
Термостат - это аппарат, в котором поддерживают постоянную температуру. Прибор состоит из нагревателя, камеры, двойных стенок, между которыми циркулирует воздух или вода. Температура регулируется тер-морегулятором. Оптимальная температура для размножения большинства микроорганизмов 37°С.
Методика приготовления пластинчатого агара
МПА расплавляют на водяной бане, затем остужают до 50-55°С. Горлышко флакона обжигают в пламени спиртовки, открывают чашки Петри так, чтобы вошло горлышко флаконы, не прикасаясь к краям чашки, выливают 10-15 мл МПА, закрыв крышку, покачивают чашку, чтобы среда равномерно распределилась, оставляют на горизонтальной поверхности до застывания. После подсушивания чашки с пластинчатым агаром хранят на холоде.
Посев петлей
Стерильной остуженной петлей берут каплю материала, левой рукой приоткрывают один край чашки, вносят петлю внутрь и у противоположного края делают петлей несколько штрихов на одном месте, затем петлю отрывают и засевают материал параллельными штрихами от одного края чашки к другому с интервалом 5-6 мм. В начале посева, когда микробов на петле будет много, они дадут сливной рост, но с каждым штрихом микробов на петле остается все меньше, и они будут оставаться одиночными и давать изолированные колонии.
Посев по методу Дригальского
Этот метод используется при посеве материала, обильно обсемененного микрофлорой (гной, испражнения, мокрота). Для посева по методу Дригальского берут шпатель и несколько чашек (3-4). Шпатель - это инструмент, изготовленный из металлической проволоки или стеклянного дрота, загнутого в виде треугольника или Г-образно. Материал петлей или пипеткой вносят в первую чашку и равномерно распределяют шпателем по поверхности среды, этим же шпателем, не прожигая его, втирают материал в питательную среду во второй чашке, а затем - в третьей. При таком посеве в первой чашке будет сливной рост, а в последующих чашках вырастают изолированные колонии.
Выделение чистой культуры по Щукевичу
Для посева берут свежеприготовленную питательную среду с конденсатом. Исследуемый материал забирают петлей и вносят его осторожно, соблюдая правила асептики, не касаясь среды и стенок, в конденсационную воду. Бактерии с высокой подвижностью «выползают» на влажную поверхность скошенного агара.
В результате самостоятельной работы студент должен знать:
1. Классификацию, морфологию грибов, их методы изучения.
2. Классификацию и морфологию актиномицетов.
3. Правила противоэпидемических режимов и техники безопасности.
Уметь:
1. Дифференцировать микроорганизмы при микроскопии.
2. Микроскопировать окрашенные препараты.
3. Обеззараживать материал, обрабатывать руки дезинфирующими препаратами.
4. Приготавливать препараты из чистых культур.
Дифференциально-диагностические среды - специальные смеси питательных веществ, применяемые для определения видовой принадлежности микробов и изучения их свойств. При росте бактерий на дифференциально-диагностических средах протекают химические процессы, обусловленные наличием у микробной клетки различных ферментов. Одни из них способны расщеплять белки , другие - углеводы , третьи - вызывать реакции окисления и восстановления и т. д. Благодаря действию ферментов в дифференциально-диагностической среде происходят соответствующие изменения.
Дифференциально-диагностические среды можно разделить на четыре основные группы.
Рис. 1-6. Различные формы расщепления желатины. Рис. 7 - 9. Жидкая среда с углеводом и индикатором Андраде: рис. 7 - отсутствие ферментации; рис. 8 - ферментация с образованием кислоты ; рис. 9 - ферментация с образованием кислоты и газа. Рис. 10 - 12. Полужидкая среда с углеводом и индикатором BP (из сухой питательной среды): рис. 10 - отсутствие ферментации; рис. 11 - ферментация с образованием кислоты; рис. 12 - ферментация с образованием кислоты и газа. Рис. 13-15. Искусственная лакмусовая сыворотка по Зейтцу: рис. 13 - отсутствие ферментации; рис. 14 - ферментация с образованием кислоты; рис. 15 - ферментация с образованием щелочи . Рис. 16 и 17. Молоко с метиленовым синим: рис. 16 - отсутствие редукции; рис. 17 -редукция. Рис. 18 и 19. Среда Симонса: рис. 18 -отсутствие ассимиляции цитрата; рис. 19 - ассимиляция цитрата. Рис. 20 - 24. Лакмусовое молоко: рис. 20 - отсутствие ферментации; рис. 21 - ферментация с образованием кислоты; рис. 22 - ферментация с образованием щелочи; рис. 23 - пептонизация; рис. 24 - редукция. Рис. 25. Разжижение свернутой сыворотки (в проходящем свете). Рис. 26. Гемолиз на кровяном агаре (в проходящем свете). Рис. 27. Кровяная среда с теллуритом калия.
1. Среды, содержащие белок и выявляющие способность микробов расщеплять белки (протеолитические Свойства): мясо-пептонная желатина «столбиком», свернутая лошадиная или бычья сыворотка, молоко, кровяной агар. При посеве бактерий проколом в мясо-пептонную желатину, «столбиком» в случае расщепления белка наблюдают разжижение среды. При посеве на среду со свернутой сывороткой расщепление белка определяют по разжижению среды и образованию углублений на ее поверхности. Расщепление микробом молока выявляется просветлением или растворением первоначально свернувшегося молока. Наличие гемолитической активности исследуемой культуры проверяют посевом ее в чашку Петри на специальный кровяной агар. В результате разрушения эритроцитов вокруг колоний (например, гемолитического стрептококка или стафилококка) образуются зоны просветления.
2. Среды для выявления способности микробов расщеплять углеводы и высокоатомные спирты (Эндо среда, Левина среда, Расселла среда, Дригальского - Конради среда, Рапопорт - Вайнтрауба среда, Шустовой среда). Для выявления этих свойств микроорганизмов применяют также «пестрый» ряд, т. е. серию пробирок, содержащих питательные среды, включающие различные углеводы, многоатомные спирты и индикатор. В качестве индикаторов пользуются лакмусовой настойкой или бромтимоловым синим. Разложение какого-либо из углеводов с образованием кислоты выявляют по изменению цвета индикатора, образование газа- по заполнению газом и всплыванию специального стеклянного поплавка в жидкой среде. Или применяют полужидкие Гисса среды (см.) с 0,5% агара с соответствующими сахарами и индикатором Андраде. После посева микроба на эти среды образование кислоты выявляют покраснением среды, а образование газа - по появлению его пузырьков в агаре или по разрыву и сдвигу вверх агарового столбика. К дифференциально-диагностическим средам второй группы относят также крахмальный агар, служащий для определения способности микробов расщеплять крахмал , среду Кларка и др.
3. Среды, на которых выявляется способность микробов обесцвечивать красители , добавленные к бульону: метиленовый синий, тионин, лакмус, индигокармин , нейтральный красный или другие (среда Ротбергера, среда Омелянского). К третьей группе относят также среды с нитратами, служащие для определения способности микробов восстанавливать соли азотной кислоты (нитраты) в соли азотистой кислоты (нитриты) и далее в аммиак или свободный азот.
4. Среды, выявляющие способность микробов усваивать вещества, которые не усваиваются другими микробами, например среда с лимоннокислым натрием (цитратный агар Симонса) для отличия кишечной палочки, которая лишена способности ассимилировать эту среду, от других бактерий кишечной группы или среда с олеиновокислым натрием для дифференциации дифтерийной палочки от ложно дифтерийной и дифтероидов (агар Энжеринга).
К дифференциально-диагностическим средам относят также среды для дифференциации анаэробов, теллуритовые среды для дифференциации дифтерийных бактерий, среды с мочевиной, щелочные среды (Дьедонне агар) для культивирования холерного вибриона и др. См. также Идентификация микробов.
В мясопептонный бульон добавляют 3-4% агара, доводят pH до 7,6, разливают в склянки по 100 мл и стерилизуют, как обычно, в автоклаве, сохраняя в таком виде до момента приготовления фуксинсульфитного агара. Готовят фуксинсульфитный агар в день использования. Заготовлять впрок и хранить эту среду нельзя, так как она быстро краснеет.
К 100 мл расплавленного и охлажденного до 70°С 3-4%-ного мясопептонного агара стерильно добавляют 1 г лактозы, предварительно растворив и прокипятив ее в 5 мл стерильной воды. Кроме того, сюда же добавляют 0,5 мл профильтрованного насыщенного спиртового раствора основного фуксина и 2,5 мл свежеприготовленного 10%-ного раствора сернистокислого натра. Сернистокислый натр (Na2SO3) в количестве 0,5 г растворяют в 5 мл воды и перед употреблением стерилизуют кипячением.
Можно поступить и несколько иначе. Фуксин и сульфит натрия сначала смешивают в пробирке: к 0,5 мл раствора фуксина прибавляют при встряхивании раствор сульфита натрия до тех пор, пока жидкость в пробирке не станет бесцветной или слегка розовой. И в расплавленный и несколько охлажденный агар вливают уже эту смесь. Колбу со средой тщательно встряхивают для перемешивания и среду разливают в чашки Петри. После застывания среды ее подсушивают в термостате при 37 °С в течение 30 мин.
В горячем состоянии среда должна быть слабо-розового цвета, а после остывания совершенно бесцветной. Обесцвечивание фуксина в среде Эндо вызывает введенный сернистокислый натр.
Среда Симмонса
При идентификации микробов группы коли (чтобы отличить почвенный вид Escherichia coli aёrogenes от фекального вида Escherichia coli commune) применяется цитратная среда Симмонса. В 1 л дистиллированной воды растворяют 1,5 г фосфорнокислого натра (или однозамещенного фосфорнокислого аммония), 1 г однозамещенного фосфорнокислого калия (КН2РO4), 0,2 г сернокислого магния, 2,5-3 г кристаллического лимоннокислого натрия, устанавливают pH 7,0-7,2, добавляют 2% агара и, расплавив среду, разливают ее в колбы по 100 мл. Стерилизуют в автоклаве 15 мин при 120°С.
Перед употреблением в среду необходимо добавить индикатор. Можно использовать либо бромтимолблау, либо фенолрот. Индикатор добавляют к 100 мл расплавленной среды. Бромтимолблау берут в количестве 1 мл спиртового 1,5%-ного раствора. Среда приобретает оливково-зеленый цвет. Фенолрот добавляется в количестве 2 мл 1,5%-ного спиртового раствора. Среда окрашивается в желтый цвет. После добавления индикатора среду разливают в пробирки и стерилизуют в автоклаве при 120°С в течение 15 мин.
Пестрый ряд углеводов, или среды Гисса
Для определения ферментативной способности микроорганизмов пользуются средами Гисса. В зависимости от наличия в микробной клетке того или иного фермента она способна разлагать какой-либо один из углеводов с образованием определенных продуктов разложения, поэтому в состав среды вводится какой-либо углевод: лактоза, глюкоза, маннит, сахароза и пр. Набор таких сред получил название «пестрого ряда углеводов».
Сначала готовят пептонную воду: на 1 л дистиллированной воды берут 10 г пептона и 5 г химически чистой поваренной соли, кипятят до растворения пептона, фильтруют через бумажный фильтр (фильтрат должен быть совершенно прозрачным) и устанавливают pH 7,2-7,4. Затем к 100 мл пептонной воды добавляют по 0,5 г одного из применяемых углеводов и по 1 мл индикатора Андреде.
В состав индикатора Андреде входит: 0,5 г кислого фуксина, 16 мл 1 н. раствора едкого натра (NaOH) и 100 мл дистиллированной воды. При необходимости индикатор можно готовить заранее и сохранять его в темном месте, предварительно про-кипятив при 100 °С в течение 15 мин. После введения индикатора среды разливают по пробиркам с поплавками и стерилизуют в кипятильнике Коха трижды по 30 мин. По окончании стерилизации поплавки должны быть погружены в среду, в противном случае пробирка не может быть использована. Среды Гисса с реактивом Андреде имеют соломенно-желтый цвет без розового оттенка. При развитии в среде микроорганизмов последние, разлагая сахар с образованием кислоты, вызывают изменение реакции. А так как в кислой среде индикатор Андреде краснеет, то это и является свидетельством, что микроорганизм использует данный сахар для своей жизнедеятельности. Отсутствие покраснения, наоборот, свидетельствует об отсутствии в ферментативном комплексе изучаемого микроба фермента, разлагающего имеющийся в среде углевод.
1. ПС для культивирования и изучения биохимических свойств.
1.1. Среды Эндо, Левина, Плоскирева . Используют как дифференциально-диагностические элективные среды для культивирования бактерий кишечной группы (содержит лактозу). Микроорганизмы, ферментирующие находящийся в этих средах молочный сахар (лактозу) образуют окрашенные колонии- лактозоположительные (колонии красного цвета с металлическим блеском или без блеска) . Колонии микробов, не ферментирующие лактозу, бесцветные - лактозонегативные – нежно-розовые, прозрачные, пропускающие свет.
К 100 мл МПА (рН 7,6) при температуре 70°С стерильно добавляют 5 мл 20% раствора лактозы и смесь 0,5 мл насыщенного раствора основного фуксина с 1,25 мл свежеприготовленного раствора сульфата натрия.
1.2.Среды с крахмалом определяют микроорганизмы, образующие амилазу. Об этом узнают, прибавив к культуре несколько капель раствора Люголя, - цвет среды не изменяется. Нерасщепленный крахмал дает с этим раствором синее окрашивание.
1.3.Молоко. При росте микроорганизмов, сбраживающих лактозу, свертывается.
2. Коммерческие наборы – для изучения биохимических свойств (определение набора ферментов микроорганизмов для их идентификации).
2.1. Микротесты - системы (МТС). Они представляют собой полистироловые пластины с лунками, в которых содержатся стерильные дифференциально-диагностические среды.
2.2.Системы индикаторные бумажные (СИБ) - дифференциально-диагностические среды на фильтровальной бумаге.
3. Для культивирования и дифференциации анаэробных микроорганизмов: среда Вильсон-Блера . Готовят из мясо-пептонного агара, к которому добавляют глюкозу, Na 2 S0 3 , хлорид железо FeCl 2 . На этой среде возбудитель газовой гангрены образует почернение и разрыв агара. Рост происходит в глубине агара. При этом осуществляется восстановление Na 2 S0 3 в Na 2 S (сульфит натрия), который соединяясь с хлоридом железа, образует сульфат железа черного цвета. Разрыв питательной среды связан с газообразованием.
4. ПС для изучения сахаролитических свойств:
Среды Гисса с углеводами (глюкоза, лактоза, сахароза, арабиноза и другие) в которых выявляют ферментативную активности микроорганизмов. Под действием образующейся при расщеплении углевода кислоты индикатор изменяет окраску среды. Соломенно-желтого цвета среда при положительной реакции меняет цвет на красный или интенсивно розовый, поэтому эти среды названы «пестрый ряд». Микробы, не ферментирующие данный углевод, растут на среде, не изменяя ее цвета. Наличие газа устанавливают по образованию пузырьков в средах с агаром или по скоплению его в «поплавке» на жидких средах.
Пептон - 10 г, хлорид натрия - 5 г, углевод - 10 г, реактив Андреде (фуксин)- 10 мл, вода дистиллированная до 1000 мл, рН после стерилизации 7,2-7,4.
5. ПС для изучения протеолитических свойств:
Среды с желатином . В некоторых бактериях (холерный вибрион, стафилококк, сибиреязвенная палочка и т. д.) протеолитические ферменты выявляются путем разжижения желатины.
Среды с молоком. Микроорганизмы, расщепляющие казеин (молочный белок), вызывают пептонизацию молока - оно приобретает вид молочной сыворотки.
Среды с пептоном. При расщеплении пептонов могут выделяться индол, сероводород, аммиак. Их образования определяют с помощью индикаторных бумажек. Фильтровальную бумагу заранее пропитывают определенными растворами, высушивают, нарезают полосками и, после посева культуры на МПБ, помещают под пробку между нею и стенкой пробирки. После инкубации в термостате учитывают результат. Аммиак вызывает посинение лакмусовой бумажки; при выделении сероводорода на бумажке, пропитанной раствором, содержащим ацетат свинца, бикарбонат натрия, происходит образование сульфата свинца - бумажка чернеет; индол вызывает покраснение бумажки, пропитанной горячим насыщенным раствором щавелевой кислоты.
Работа № 2. Характер роста бактерий на питательных средах
(культуральные свойства)
Цель: изучить характер роста бактерий на плотной питательной среде - МПА.
Самостоятельная работа: описать культуральные свойства колоний,выросших на МПА, результаты внести в таблицу
__________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
______________________________________________________________________________
Конец работы -
Эта тема принадлежит разделу:
Учебно-методический комплекс по «Микробиологии, вирусологии»
Гбоу впо тюмгма минздрава России.. кафедра микробиологии.. учебно методический комплекс..
Если Вам нужно дополнительный материал на эту тему, или Вы не нашли то, что искали, рекомендуем воспользоваться поиском по нашей базе работ:
Что будем делать с полученным материалом:
Если этот материал оказался полезным ля Вас, Вы можете сохранить его на свою страничку в социальных сетях:
| Твитнуть |
Все темы данного раздела:
Методы создания анаэробных условий
1) Физические методы. Методы основаны на выращивании микроорганизмов в среде без воздуха
Посев в среды, содержащие редуцирующие и легко окисляемые вещества:
В качестве ред
К работе № 3
Культивирование вирусов
Для культивирования вирусов используют:
1) Куриные эмбрионы. Куриный эмбрион - удобная модель для культивирования вирусов с целью получени
Самостоятельная работа во внеурочное время
Что изображено на фотографии?
Цель применения устройства? Какие
Функции ЦПМ.
1. защитная.
2. локализация ферментов ЦПЭ.
12. Бактериальный нуклеоид содержит:
2. полиамины.
13. У бактерий есть:
1. одна хромосома.
2. две хромосомы.
14. Бактериальная хромосома:
1. кольцевая.
2. фиксированная к ЦПМ.
15. Спорообразование у бактерий:
1. происходит во внешней среде.
2. служит для размножения.
16. Споры:
1. окрашиваются по Граму.
17. Значение капсулы:
1. защитное.
2. формообразующие.
18. Капсулы:
1. окрашиваются по Граму.
2. видны при окраске по Граму.
19. Капсулы защищают бактерии от:
1. антител
2. фагоцитоза.
20. Жгутики:
1. есть у всех бактерии.
2. всегда располагаются по все поверхности.
21. Жгутики состоят из:
1. белков.
2. углеводов.
22. Жгутики:
1. окрашиваются по Граму.
2. окрашиваются по Бури Гинсу.
23. Подвижность бактерий изучают:
1. посевом в полужидкий агар.
2. посевом на МПА.
24. Реснички(пили):
1. есть у всех бактерий.
2. функционально различны
25. Изучение совокупности большого числа признаков бактерий необходимо для:
1. геносистематики.
2. нумерической таксономии.
26. Конечная таксономическая еденица в бактериологии :
27. Основные морфологические формы бактерий:
2. извитые.
28. Компоненты ЛПС бактерии:
1. липид А.
2. полисахарид.
29. В состав пептидогликана входят:
1. тейхоевые кислоты.
2. N- ацетилглюкозамин и M- ацетилмурановая кислота.
30. Тинкториальные свойства бактерий характеризуют:
1. устойчивость во внешней среде.
2. чувствительность к фагам.
Сложные методы окраски..
1. окраска по Уилю-Нельсену.
2. окраска по Нейссеру.
Методы микроскопии для изучения строения внутренних структур бактериальных клетку.
1. фазово-контрастная.
2. электронная
33. Нуклеоид бактерии:
1. связан с ЛПС.
2. не имеет ядерной мембраны.
34. Для окраски спор у бактерий используют:
1. окраску по Бури- Гинсу.
2. окраска по Клейну.
35. Некультивируемые формы бактерий выявляют с помощью питательной среды:
36. Метаболизм бактерий:
1. не отличается от метаболизма жив. клеток.
2. более интенсивнее чем метаболизм жив. клеток.
37. Аэробный распад белка обозначается термином:
1. брожение.
2. тление.
38. Анаэробный распад белка обозначается термином:
1.окисление.
2. гниение.
39. СО 2 в качестве единственного источника углевода используют:
1. автотрофы.
2. паратрофы.
40. Органические источники углеводов используют:
1. гетеротрофы
2. автотрофы
41. Неорганические источники углеводов используют:
1. метатрофы.
2. ауксотрофы.
42. Зависимость бактерии от того или иного субстрата обозначается термином:
1. прототрофность.
2. гетеротрофность
43. Размножение бактерии происходит:
1. почкование.
2. осмосом.
44. Активный транспорт идет:
1. по градиенту концентрации.
45. Пассивный транспорт идет:
1. по градиенту концентрации.
2. против градиента концентрации.
46. ЦПЭ у бактерии локализована в:
1. клеточной стенке.
47. Простая питательная среда:
1. сахарный бульон.
48. Сложная питательная среда:
1. сахарный бульон.
49. Элективные питательные среды позволяют:
1. дифференцировать одни виды бактерии от других.
2. культивировать бактерии одного вида.
50. Дифференциально - диагностические среды позволяют:
1. культивировать бактерии со сложными питательными потребностями.
2. отличать один вид бактерии от других.
51. Требование, предъявляемое к питательным средам:
1. стерильность.
2. питательность.
52. Определение сахаролитической активности производят при посеве на:
2. среду Пешкова.
53. Простые питательные среды стерилизуют в:
1. термостате.
2. печи Пастера.
54. Среды с углеводами стерилизуют:
1. в печи Пастера.
2. в автоклаве при 0.5 атм.
55. Лабораторную посуду стерилизуют в:
1. термостате.
2. печи Пастера.
56. Оптимальная рН питательных сред для большинства патогенных бактерии:
Механизмы транспорта веществ в бактериальную клетку, которые проходят с затратой энергии.
1. пассивная диффузия.
2. активный транспорт.
Среды, применяемые для избирательного выделения чистой культуры бактерии
определенного вида из материалов, содержащих разнообразную микрофлору:
1. основные
2. дифференциально – диагностические.
Дифференциально- диагностические среды.
1. среда Гисса
60. Методы выделения чистых культур бактерий:
1. посев штрихом.
2. посев штрихом с обжигом петли.
61. Культуральные свойства бактерий:
1. внешний вид бактерий.
2. отношение к условиям культивирования.
62. Для определения протеолитической активности бактерии проводят следующие тесты:
1. на разжижение желатина.
2. на ферментацию глюкозы.
63. Этапы бактериологического исследования:
1. посев для выделения чистой культуры бактерий.
2. накопление чистой культуры бактерий.
64. Для определения вида бактерий необходимо изучение:
1. морфологических свойств
2. культуральных свойств.
65. Биохимические свойства бактерий- это:
1. способность бактерий расщеплять сложные питательные вещества.
2. способность расщеплять на синтетических питательных средах.
66. В состав нуклеоида входит:
2. полиамины.
67. Функцию регуляторных белков у бактерий выполняют:
1. гистоны.
2. полиамины.
68. Бактерий содержат:
1. гаплоидный набор хромосом.
2. диплоидный набор хромосом.
69. Бактериальная хромосома:
1. кольцевая.
2. свободно лежащая.
70. IS- последовательности:
1. обладают автономной репликацией.
2. несут структурные гены.
71. Подвижные генетические элементы:
1. IS- последовательности.
2. транспозоны.
72. Транспозоны:
73. Генетический материал бактерий содержится в:
1. хромосоме.
2. плазмидах.
74. Плазмиды содержат:
1. структурный ген
2. ген репликации
75. В бактериальной клетке:
2. несколько копий одной плазмиды.
76. Клетки сохраняют жизнеспособность при утрате:
1. плазмиды
2. хромосомы.
77. Клетки погибают при утрате:
1. плазмиды.
2. хромосомы.
78. Генотипическое выражение пола у бактерий связано с наличием:
1. Col- плазмиды.
2. Hey- плазмиды.
79. Штаммы с высокой донорской активностью называются:
1. Hfr- штаммы.
2. R- штаммы.
80. Модификации:
1. затрагивают генотип.
2. затрагивают фенотип.
81. Модификация – это проявление:
1. генотипической изменчивости.
2. фенотипической изменчивости.
82. Мутации:
1. затрагивают генотип.
2. затрагивают фенотип.
83. Генотипическая изменчивость:
1. мутации
2. модификации.
84. Механизм рекомбинации у бактерий:
1. транскрипция.
2. трансформация.
85. При рекомбинациях у бактерий:
1. образуется мерозигота.
2. меняется количество генетического материала.
86. Передача генетической информации умеренным фагом – это:
1. трансдукция.
2. трансформация
87. Популяция бактерий по тому или иному признаку:
1. гомогенная.
2. гетерогенная.
88. Изменение генотипа у бактерий может происходить:
1. по вертикали.
2. по горизонтали.
89. Генетические методы, используемые в диагностике:
1. ДНК- зондирование.
90. Цель ПУР диагностики:
1. выявление нуклеотидных последовательностей, кодирующих видовую принадлежности бактерий.
2. выявление нуклеотидных последовательностей, кодирующих основной фактор вирулентности данного вида микроорганизма.
91. Фаги – это:
1. вирусы бактерий.
2. токсины бактерий.
92. Свойства фага:
1. инфекционность.
2. фильтруемость.
93. Фаги содержат:
1. ДНК и РНК.
2. ДНК или РНК.
94. Для фагов характерен:
1. дизъюнктивный способ репродукций.
2. размножаются простым поперечным делением.
95. Фаги бывают:
1. умеренные.
2. вируальные.
96. Взаимодействие фага с бактериальной клеткой может происходить по типу:
1. продуктивной инфекции.
2. абортивной инфекции.
97. Лизогенные клетки отличаются от нелизогенных по:
1. устойчивости к УФ излучению.
2. чувствительность к гомологичному фагу.
98. Методы выделения фагов:
1. фильтрование через бактериальные фильтры.
2. посев на питательные среды.
99. Фаги можно обнаружить по:
1. задержке роста индикаторной культуры.
2. образованию негативных колоний.
100. Фани применяют для:
1. лечения.
2. профилактики.
101. При продуктивной фаговой инфекций:
1. бактериальная клетка погибает.
2. фаг размножается.
102. Вирулентные фаги вызывают:
1. лизис клетки.
2. лизогенную конверсию.
103. Умеренные фаги вызывают :
1. лизис клетки.
2. лизогенизацию бактерий.
104. Лизогенные бактерий содержат:
1. профаг.
2. S – элементы.
105. Профаг – это:
1. интегрированное состояние фага.
2. свободное состояние фага.
106. Фаги по специфичности делят на:
1. видовые.
2. вирулентные.
107. Для фаготипирования бактерии используют фаги:
1. поливалентные.
2. видовые.
108. Фаготипирование проводят с целью:
1. эпидемиологического анализа.
2. подбора фагов для лечения.
109. Видовые фаги используются:
1. в ходе бактериологического исследования.
2. при постановке ПЦР.
110. Практическое использование фагов основано на:
1. их специфичности.
2. способности вызывать лизис бактерии.
111. Наличие фага в фильтрате определяют путем:
1. нанесение на газон индикаторной культуры.
2. посев на питательную среду.
112. Высокой бактериальной обсеменностью характеризуется:
1. толстый кишечник
2. тонки кишечник.
113 На видовой состав микрофлоры индивидуума влияет:
1. возраст.
2. экологическая ниша.
114. Функции нормальной микрофлоры:
1. витаминообразующая.
2. гормонообразующая.
115. Дисбактериоз- это:
1. качественное изменение нормальной микрофлоры.
2. количественное изменение нормальной микрофлоры.
116. Причины дисбактериоза:
1. лучевая болезнь.
2. тяжелые инфекции.
117.Показатели дисбактериоза:
1. появление патогенных бактерии.
2. появление или увеличение числа редко встречающихся в норме микроорганизмов.
118.Методы лабораторной диагностики дисбактериоза:
1. количественный бактериологический
2. серологический.
119.Принципы коррекции дисбактериоза:
1. симптоматическая терапия.
2. антибиотики.
120.Препараты для коррекции дисбактериоза кишечника:
1. бификол.
2. бифидумбактерии.
